Добро пожаловать


Вы находитесь на сайте Беломорской биологической станции МГУ им.М.В.Ломоносова.

Для того, чтобы создавать новые темы в форуме сайта, а также, чтобы комментировать материалы, вам необходимо зарегистрироваться.

Войти

Я забыл пароль

Зарегистрироваться

Главная страница Карта сайта Контактная информация
ББС МГУ

Беломорская Биологическая Станция Московского Государственного Университета им.М.В.Ломоносова
Русский язык Русский     English English

Главная » Практика » Микробиологи »


 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Беломорская практика студентов кафедры микробиологии

                                            К 300-летию со дня рождения
                                            великого русского ученого-естествоиспытателя
                                            Михаила Васильевича Ломоносова
                                            и 140-летию со дня рождения
                                           выдающегося русског микробиолога и полярного 
                                           исследователя, одного из основоположников
                                           морской и геологической микробиологии
                                           Бориса Лаврентьевича Исаченко

Отчёт по летней практике на Беломорской биологической станции МГУ

Участники летней практики кафедры микробиологии на ББС ГУ в 2011 г.

Отчёт выполнили студенты 3 – го курса кафедры микробиологии: Балаков Е., Бочкова Е., Гуридов А., Дербикова К., Кураков А., Попова Е., Пунегова А.

Руководитель практики - Колотилова Н. Н.

Ассистенты: Осмоловский А.А., Липей С.О.

Научный консультант - профессор Ивановский Р.Н.

Москва
Август 2011

Отличительная особенность Белого моря – богатая микрофауна. Здесь много и планктонных  форм, и перифитона, а также симбиотических форм. В море солёность на постоянном уровне – таким образом создаётся мощный хемостат. В связи с этим у морских микроорганизмов обычно узкая норма реакции, растут они в 3% NaCl. К микроорганизмам-продуцентам Белого моря относятся фототрофы, в первую очередь, оксигенные, а также аноксигенные. Кроме того, как продуценты могут выступать хемолитотрофы.  К деструкторам относятся гидролитики – целлюлозолитики, протеолитики, разрушители хитина. Также присутствует углеводородокисляющие бактерии, в частности, обитающие на поверхности бурых водорослей.
На примере микробиоты Белого моря можно изучать микроорганизмы, участвующие в глобальном цикле серы. Это сульфатредукторы, восстанавливающие сульфаты до сероводорода; аноксигенные фототрофы, использующие сероводород как донор электронов; серные бактерии типа Beggiatoa, окисляющие восстановленные соединения серы.

Скальные ванны

Скальные ванны – заполненные водой углубления в скалах, представляют собой особый тип местообитания (фото 1). Водоёмы такого типа можно обнаружить на некоторых беломорских островах вблизи ББС. Нами были исследованы скальные ванны северного берега острова Покормёжный и северного берега острова Костьян. Оба острова расположены к востоку от биостанции, а Покормёжный – практически в открытом море. Северные берега этих островов изобилуют скальными ваннами различной формы с линейными размерами до трех 3 метров. Условия среды могут сильно разниться даже в ваннах, расположенных на расстоянии нескольких метров друг от друга. По положению относительно моря можно условно выделить три типа ванн: наиболее удалённые от моря верхние ванны, по берегам нередко заросшие высшими растениями и имеющие облик болот (фото 2); наиболее близкие к морю нижние ванны, в которых нередко обнаруживаются бурые водоросли Fucus (фото 3, фото 4), а также промежуточная группа (фото 5). Вода в этих “средних” ваннах нередко имела зеленоватый или буроватый цвет, а на камнях на дне этих ванн обычно имелся налёт зелёного, жёлтого, пурпурного цвета (фото 6). 

Можно выделить несколько факторов, определяющих условия в скальных ваннах.
1. Геологический фактор: рельеф местности, состав пород и угол залегания  во многом формирует не только облик ванн, но и влияет на рН водоёма.
2. Воды осадков и стоков опресняют ванны. Очевидно, в большей степени этому подвержены верхние ванны.
3. Морская вода, попадая в ванны с приливами или при шторме, повышает солёность воды в ванне. Кроме того, буферные свойства морской воды делают возможным существование в этих условиях организмов особой группы.
4. Температура внешней среды и солнце способствуют изменению солёности водоёмов (происходит выпаривание соли, это было особенно ярко выражено на о. Костьян в ваннах промежуточного типа).
5. Высшие растения, произрастающие по берегам некоторых верхних ванн, способствуют повышению рН.

  Наиболее удалённые от моря верхние ванны, по берегам нередко зарастают высшими растениями и имеют облик болота. В самых близкие к морю нижних ваннах нередко обнаруживаются бурые водоросли Fucus.
Фото 1. Скальные ванны – заполненные водой углубления в скалах, представляют собой особый тип местообитания Фото 2. Наиболее удалённые от моря верхние ванны, по берегам нередко зарастают высшими растениями и имеют облик болота. Фото 3. В самых близких к морю нижних ваннах нередко обнаруживаются бурые водоросли Fucus.
Одна из нижних ванн на острове Покормежный.  Одна из скальных ванн  с промежуточным положением. Вода в средних ваннах нередко имеет зеленоватый или буроватый цвет, а на камнях на дне этих ванн обычно есть зелёный, жёлтый или пурпурный налёт.
Фото 4. Одна из средних ванн на острове Покормежный. Фото 5. Одна из скальных ванн  с промежуточным положением. Фото 6. Вода в средних ваннах нередко имеет зеленоватый или буроватый цвет, а на камнях на дне этих ванн обычно есть зелёный, жёлтый или пурпурный налёт.

Скальные ванны островов Покормёжный и Костьян

Можно выделить несколько факторов, определяющих условия в скальных ваннах.
1. Геологический фактор: рельеф местности, состав пород и угол залегания  во многом формирует не только облик ванн, но и влияет на рН водоёма.
2. Воды осадков и стоков опресняют ванны. Очевидно, в большей степени этому подвержены верхние ванны.
3. Морская вода, попадая в ванны с приливами или при шторме, повышает солёность воды в ванне. Кроме того, буферные свойства морской воды делают возможным существование в этих условиях организмов особой группы.
4. Температура внешней среды и солнце способствуют изменению солёности водоёмов (происходит выпаривание соли, это было особенно ярко выражено на о. Костьян в ваннах промежуточного типа).
5. Высшие растения, произрастающие по берегам некоторых верхних ванн, способствуют повышению рН.

Очевидно, весь комплекс факторов должен влиять на видовой состав микробиоты скальных ванн. Можно ожидать, что в ваннах, приближенных к морю, будет наблюдаться большее сходство по видовому составу с морем, а в наиболее удалённых от моря верхних ваннах будут обнаруживаться характерные для пресных вод виды. В то же время для средних ванн можно предположить доминирование автохтонной микробиоты.*

*Разные водоемы различаются как по физико-химическим условиям, так и по уровню первичной продукции (дистрофные, олиготрофные, мезотрофные и евтрофные). Органическое вещество может образовываться непосредственно в водоеме (автохтонное), а может попадать в водоем извне (аллохтонное). Организмы, освоившие разные варианты водоемов, используют разные экологические стратегии – совокупность реакций организма на действие факторов окружающей среды. Различают автохтонные и аллохтонные микроорганизмы. Автохтонные микроорганизмы постоянно присутствуют в сообществе независимо от количества питательных веществ в нем и растут, как правило, медленно, как К-стратеги. Аллохтонные (или зимогенные) микроорганизмы, появляются «всплесками», когда повышается содержание органического вещества (например, один раз в году при листопаде), растут как r-стратеги, т.е. с высокими скоростями роста. При таком быстром росте рассеивается много энергии и органического вещества. Позднее был определен еще один тип стратегии — L-стратегия, основанная на высокой устойчивости к возмущениям в окружающей среде и способности к переживанию неблагоприятных условий.

Остров Покормёжный (2.08.2011)

На северном берегу острова Покормёжный нами были исследованы 15 ванн. Непосредственно на месте в каждой из них измеряли солёность при помощи соленометра, а также рН с помощью рН-метра. В каждом из водоёмов были отобраны пробы воды, которые в дальнейшем микроскопировали. Для большинства прокариот, за исключением ряда характерных представителей, морфологические признаки для идентификации недостаточны, а для водорослей и цианобактерий было выполнено предварительное определение.

Таблица 1. Скальные ванны северного берега острова Покормёжный


Остров Костьян (5.08.2011)

Применялись те же методы исследования, что и для ванн острова Покормёжный. На Костьяне исследованы 10 водоёмов на западном и восточном склоне северного берега.

Таблица 2. Скальные ванны западного склона северного берега острова Костьян.

Таблица 3. Скальные ванны восточного склона северного берега острова Костьян

Список микроорганизмов, обнаруженных обнаруженных в скальных ваннах островов покормежного и Костьяна

Зелёные водоросли – Chlorophyta

Chlorogonium sp.
Closterium sp.
Dunaliella sp.
Scenedesmus sp.
Tetraedron sp.
Ulothrix sp.

Бурые водоросли – Ochrophyta, Phaeophyceae

Fucus sр. (макроорганизм)

Диатомовые водоросли – Bacillariophyсeae

Diatoma sp.
Fragillaria sp.
Melosira sp
Navicula  sp.
Nitzschia sp.
Pinnularia sp.
Tabellaria sp

Эвгленовые водоросли – Euglenophyta

Euglena sp.

Коловратки – Rotatoria

Инфузории – Ciliophora

Paramecium sp.

Пурпурные серные бактерии

Chromatium sp.
Thiocystis sp.
Thiopedia sp.

Бесцветные серные бактерии

Achromatium sp.
Beggiatoa sp.
Thiodendron sp.
Thiothrix sp.

Цианобактерии

Anabaena sp.
Gloeothece sp.(Aphanocapsa sp?)
Gomphosphaera sp.(?)
Oscillatoria sp.
Spirulina sp.

Кроме того, были обнаружены одноклеточные водоросли и цианобактерии (фото 7), а также другие бактерии разнообразной морфологии (кокки, диплококки, вибрионы), идентифицировать которых не удалось.

Как и следовало ожидать, по видовому составу микробиота верхних, средних и нижних ванн значительно отличается друг от друга. Для средних ванн, вероятно, более характерна автохтонная микробиота, в то время как в верхних и нижних ваннах микробиота во многом аллохтонная. В верхних ваннах обнаружено большое количество микроскопических эукариот – диатомовых (Navicula, Diatoma, Pinnularia), зелёных (Ulothrix, Tetraedron, Closterium, Melosira, Dunaliella) и эвгленовых (Euglena) водорослей. Из прокариот были встречены цианобактерии Anabaena, Oscillatoria, а также
одноклеточные формы. Эти организмы являются в ваннах первичными продуцентами, осуществляющими фотосинтез, и служат пищей для зоопланктона – коловраток, рачков, инфузорий. В верхних ваннах, вероятно, есть и другие прокариоты, однако для выявления их следует провести более детальные исследования с посевом проб воды на питательные среды, не ограничиваясь лишь микроскопией проб.
Как уже было отмечено, ванны среднего уровня могли иметь зелёный или пурпурный налёт на камнях. В первом случае роль первичного продуцента принадлежит, как и в верхних ваннах, зелёным водорослям и нитчатым цианобактериям, причём последних становится больше, чем в верхних ваннах.

В красных водоёмах в качестве продуцентов могут выступать фототрофные  пурпурные серные бактерии (Thiocystis, Thiopediа и хемолитотрофные бесцветные серные бактерии (Achromatium, Beggiatoa, Thiothrix, фото 8). В ваннах были обнаружены серные нитчатые бактерии (фото 9), ассоциированные с нитчатыми водорослями, в некоторых ваннах они весьма многочисленны. 


 Встречены в ваннах этого типа и зелёные и диатомовые водоросли, но их количество меньше. Доминирующими фототрофами являются, главным образом, цианобактерии и пурпурные бактерии. На этом же уровне обнаружены ванны с наиболее высокой солёностью, где обитает галофил Dunaliella.


Нижние ванны наиболее холодные, и по солёности сходны с морской водой. Это влияет на видовой состав обитающих там микроорганизмов. Здесь почти нет цианобактерий, диатомей, зелёных водорослей, а первичным продуцентом служит типично морская бурая водоросль Fucus.

Литораль

Литораль - зона, затопляемая во время прилива и осушаемая при отливе. Она располагается между уровнем воды в самый низкий отлив и уровнем воды в самый высокий прилив; покрывается водой и освобождается от неё дважды в сутки. Ограничена сверху супралиторалью, снизу — сублиторалью. В зависимости от уклона дна и амплитуды приливо-отливных колебаний ширина литорали может быть от нескольких до многих сотен метров. Ширина и характер грунта, слагающего литораль, зависит от характера залегания подстилающих коренных пород, воздействия ветров, силы и направления прибрежных течений, а также наличия берегового стока. В районе ББС МГУ ширина литорали варьирует от нескольких до двух-трех сотен метров. На участках, подверженных сильному прибою, литораль, как правило, узкая, всего несколько метров в ширину. Она может быть скальной — в виде «бараньих лбов» округлых очертаний, валунной, гравийной песчано-гравийной. Большая часть береговой линии в окрестностях биостанции не столь подвержена волновому воздействию, и ее ширина до нескольких десятков метров. Между уровнями среднего квадратурного прилива и среднего квадратурного отлива, как правило, находится зона из мягких грунтов, чаще алевритисто-песчаных с примесью грубообломочного материала; у нижней границы осушки обычно тянется валунный пояс, сформированный в результате взаимодействия припайных льдов и приливно-отливных колебаний, а мористее его (ближе к морю) — отливный пляж, либо склон, который уходит под уровень сизигийного отлива.

Независимо от типа субстрата литоральной зоны (камни, песок, ил) живущие в ней организмы должны быть приспособлены к периодическому (ежесуточному) воздействию воздуха и горячих солнечных лучей во время отлива. Подвижные существа спасаются от высыхания, живя в норках или образуя трубочки, куда прячутся при спаде воды, либо заползают под камни, кучи водорослей и т. п. Многим из неподвижных организмов свойственна тонкая, быстро высыхающая на воздухе кожа. Они вынуждены бороться с высыханием, образуя плотные скопления, к поверхности которых прикрепляются кусочки раковин и другие мертвые частицы. Это помогает сохранить влагу внутри группы. Благодаря агрегационному образу жизни эти животные могут несколько часов оставаться на воздухе и не погибать под воздействием прямых солнечных лучей.

Изучение микобиоты литорали Белого моря

Эта часть микробиологической практики предполагает решение двух основных задач:
1) оценка видового состава микромицетов литорали Белого моря в целом;
2) сравнительный анализ роста и состава микромицетов в зависимости от следующих характеристик:
     а) место отбора проб;
     б) наличие NaCl в среде.

Для отбора проб была выбрана песчаная литораль на Еремеевском пороге.

Одна проба была отобрана из ризосферы Tripolium vulgare (Aster tripolium), и вторая - на песчаном заиленном грунте литорали.

Определение состава микромицетов из этих проб проводилось на среде ГПА (глюкозо-пептонный агар)  с добавлением дрожжевого экстракта. В качестве элективного фактора в этой среде присутствовал Str-SO42- (Стрептомицин сульфат - аминогликозидный антибиотик широкого спектра действия). Среда была приготовлена в двух вариантах – с добавлением и без добавления 3% NaCl. Рост только при концентрации 3% NaCl, характерной для морской воды, должен был служить указанием на вероятную приуроченность микроорганизмов к морской среде обитания. Посев был сделан в 2х повторностях. Микроорганизмы культивировали в термостате в течение 4 суток.

В результате было выделено и идентифицировано 6 основных родов грибов:
          1. Penicillium;
          2. Mucor;
          3. Fusarium;
          4. Chaetomiu;
          5. Alternaria;
          6. неидентифицированные представители порядка Zygomycetales.

Были выявлены следующие закономерности:
1. Использованные в среде концентрации NaCl на рост микромицетов влияют незначительно, что, скорее всего, свидетельствует об их широкой норме реакции.
2. Более обильный рост был отмечен в случае посева пробы №1 (ризосфера галофтов), рост микроорганизмов из пробы литорали был более слабым.

Актиномицеты литорали Белого моря

Задачей изучения актиномицетов Белого моря было определение видового состава в пределах литорали Еремеевской губы.
Была приготовлена минеральная среда Гаузе следующего состава:
                KNO3 - 1 г/л
                K2HPO4 - 0,5 г/л
                MgSO4 - 0,5 г/л
                крахмал - 20 г/л
                агар - 30 г/л

Среда была приготовлена в двух вариантах: с добавлением 3% NaCl и без NaCl.

Пробы были отобраны по тому же принципу, что и в предыдущей задаче: одна из ризосферы галофитов Tripolium vulgare (Aster tripolium), и вторая из оголенной песчаной части верхней литорали. Посев делали в двух повторностях. В результате были обнаружены колонии рода Streptomyces следующих морфотипов:
1) белые матовые плоские;
2) серые матовые концентрические;
3) белые с фиолетовым центром.

В противоположность грибам, в случае проб из ризосферы колоний было больше. Концентрации NaCl в среде на уровень роста актиномицетов влияют незначительно.

Выделение углеводородокисляющих микроорганизмов

Самоочищение моря от нефтяного загрязнения – сложный, многофакторный процесс, в котором одновременно  участвуют и физические, и химические, и биологические механизмы: испарение, рассеяние, растворение, эмульгирование, агрегирование, сорбирование на взвесях, химическое и фотохимическое окисление, физическая и биологическая седиментация. Однако, согласно современным представлениям, единственным компонентом водных экосистем, способным разрушать антропогенные нефтяные углеводороды и вводить их в естественный круговорот органических веществ, являются микроорганизмы; описано 70 родов микроорганизмов, включающих 28 родов бактерий (свыше 100 видов), 30 видов грибов и 12 видов дрожжей, окисляющих один или несколько углеводородов.

В связи с этим был поставлен следующий опыт. Приготовлена жидкая минеральная среда для углеводородокисляющих микроорганизмов с разной концентрацией NaCl или морской соли (0%; 1%; 3%; 5%), в нее внесено дизельное топливо и кусочки фукусов. Через неделю во всех вариантах посева был отмечен рост микроорганизмов. Затем из каждого варианта был произведен посев на твердую агаризованную среду (БСА). Рост по штриху во всех вариантах выглядел примерно одинаково. Засеянные чашки Петри были привезены в Москву для дальнейшего исследования.

Сообщество вала гниющих фукусов

В верхней литорали располагается зона штормовых выбросов. Она представляет собой полосу гниющих водорослей, принесенных приливом. Гниющие фукусы являются местом обитания для определенных сообществ микроорганизмов. Данный биотоп богат углеродом, но беден связанными формами азота, в связи с чем наблюдается высокое количество азотфиксирующих организмов. Также присутствует сероводород, который выделяется при разложении белков из серосодержащих аминокислот: цистеина и метионина. Из данного местообитания выделяли три группы микроорганизмов: аэробных гетеротрофов, сульфатредукторов и азотфиксаторов.

Аэробные гетеротрофы

Смыв с гниющих фукусов высевали на БСА. Через три дня было обнаружено два типа колоний:

- бежевые глянцевые колонии с волнистым краем. Микроскопия показала наличие подвижных палочек. Клетки грамотрицательные, каталазоположительные (фото 10).

- бежевые глянцевые округлые колонии. При микроскопировании обнаружены подвижные палочки. Клетки грамотрицательные, каталазоположительные (фото 11).

Колонии микроорганизмов из смыва с гниющих фукусов Фото 10. Бежевые глянцевые колонии с волнистым краем. Окраска фуксином, увеличение 900х. Фото 11. Бежевые глянцевые округлые колонии. Окраска фуксином, увеличение 900х.

Сульфатредукторы

Большинство сульфатредукторов являются хемооргано- или хемолитогетеротрофами. Одни окисляют органические кислоты до ацетата, другие окисляют ацетат до углекислоты.
Для выделения сульфатредукторов использовали жидкую среду Ван-Дельдена следующего состава (г/л):
          Аспарагин – 1,0;
          MgSO4 – 1,0;
          K2HPO4 – 0,5;
          Fe – цитрат – 0,1-0,5.
Культивирование проводили в анаэробных условиях в высоких пробирках с резиновыми пробками. Использовали три варианта среды, содержащие разные источники углерода: ацетат, цитрат, глюкозу. Талломы гниющих фукусов помещали в среду.

Через два дня провели анализ посевов. О наличии сульфатредукторов судили по потемнению среды и образованию сероводорода.
Наиболее обильный рост сульфатредукторов наблюдался на среде с цитратом. В пробирках с ацетатом рост был менее обилен. Из этого наблюдения мы можем сделать вывод, что в пробе преобладали сульфатредукторы, окисляющие цитрат.
В пробирках с глюкозой наблюдалось ярко выраженное брожение (обильное образование пузырьков газа), из чего следует, что данная среда наиболее благоприятна для развития бродильщиков. Позднее в этой среде был констатирован рост сульфатредуцирующих бактерий, развивавшихся, видимо, за счет органических кислот - продуктов брожения глюкозы.
Микроскопия выявила наличие в культурах палочек и нитей.

Азотфиксаторы

При выделении азотфиксаторов нами были обнаружены бактерии рода Clostridium. Это анаэробные грамположительные палочки, образующие эндоспоры клостридиального типа, они проводят маслянокислое или смешанное брожение. Для выделения азотфиксаторов мы использовали среду c глюкозой, не содержащую связанных форм азота.

Выводы

При изучении микроорганизмов вала гниющих фукусов нами были выделены три группы микроорганизмов: аэробные гетеротрофы, сульфатредукторы, зотфиксаторы.

Гидролитики

Прибрежная зона Белого моря является местом обитания микроорганизмов, проявляющих способность к гидролизу биополимеров. Мы изучали две группы гидролитиков: протеолитиков и целлюлозолитиков.

Протеолитики

Протеолитические микроорганизмы осуществляют гидролиз белков. Источником выделения данных микроорганизмов был грунт с литорали. Была приготовлена суспензия на водопроводной воде. Разведение исходной суспензии (10-2) посеяли на чашки  Петри со средой Ваксмана с казеинатом натрия, следующего состава (г/л):
          Глюкоза – 10
          KH2PO4 – 1,0
          MgSO4 – 0,5
          Казеинат натрия – 10
          Агар – 20
Казеинат натрия был единственным источником углерода.

Спустя сутки на среде были обнаружены белые округлые глянцевые кратерообразные колонии. Микроскопия показала наличие грамотрицательных, каталазоположительных палочек (фото 12). 
 
Аналогично производился посев на агар с фибрином (г/л):
          KH2PO4 – 1,0
          MgSO4 – 0,5
          NaCl – 0,5
          Фибрин – 10
          Агар – 20
Фибрин был единственным источником углерода и азота.


При анализе посевов было обнаружено три типа колоний:
- белые округлые крупные глянцевые колонии. Грамотрицательные, каталазоположительные неподвижные палочки;
- белые округлые мелкие глянцевые колонии. Грамотрицательные, каталазоположительные. Маленькие толстые неподвижные палочки, есть споры;
- желтые плоские колонии с волнистым краем. Грамотрицательные, каталазоположительные. Подвижные палочки.

Также исследовали протеолитическую микробиоту около Черных щелей. Для этого выбрали затопляемую заиленную лагуну с постоянными очертаниями. Для определения локализации очагов гидролиза погружали вертикально пластинку с желатиновым покрытием; спустя неделю ее извлекли. На пластинке можно было наблюдать три области. Первая соответствовала воздушному горизонту (2,5 см). Вторая часть – водному (6 см). На этих участках изменений не наблюдалось. Нижняя часть пластинки была погружена в ил на глубину 15 см. На этом участке обнаружены области гидролиза (белые пятна). В некоторых участках желатиновый слой был гидролизован полностью. Большая часть зон гидролиза содержали некоторое количество желатина. Наибольшее количество пятен наблюдалось в верхней части пластинки. Вероятно, это говорит о преобладании гидролитиков в верхнем слое ила, что может быть связано с уменьшением количества кислорода и питательных веществ при погружении вглубь ила.

Целлюлозолитики

Целлюлозолитические микроорганизмы гидролизуют целлюлозу, используя продукты гидролиза в качестве источника углерода и энергии. Для их обнаружения использовали среду Гетчинсона-Клейтона следующего состава (г/л):

          KH2PO4 – 1,0
          MgSO4 – 0,5
          FeSO4 – 0,01
          NaNO3 – 2,5
          Карбоксиметилцеллюлоза (КМЦ) – 10
          Агар – 20

В среде Гетчинсона-Клейтона единственным источником углерода служит карбоксиметилцеллюлоза. Это позволяет выделить организмы, способные гидролизовать данный субстрат.
При анализе посевов были обнаружены два типа колоний:

- Белые колонии актиномицетов (фото 13). Тест на каталазу отрицательный.
 
- Мелкие бежевые колонии (фото 14). Тест на каталазу положительный.

 Также для обнаружения целлюлозной активности вертикально погружали фильтровальную бумагу в деревянной рамке в ил лагуны около Черных щелей, при этом вторая находилась в водном горизонте. Через неделю рамку с бумагой вынули и проанализировали.

Зон гидролиза, обнаруживаемых невооруженным глазом, выявлено не было. При микроскопировании в «водном» слое были обнаружены Oscillatoria sp., Thiocystis sp. На бумаге, погруженной в ил, были обнаружены Oscillatoria sp., Diatoma sp.

Перифитон

Для исследования перифитона нетканое полотно, натянутое на пяльцы, было вертикально закопано в ил и инкубировалось в течение 7 суток. Когда его достали, на нем четко были видны 3 зоны, соответствующие водной толще, иловым отложениям и зоне раздела сред ил-вода. Зона контакта воды и грунта была окрашена в бутылочно-зеленый цвет за счет большого количества цианобактерий рода Oscillatoria.

Выводы

Таким образом, в пробах, отобранных на литорали, были выделены микроорганизмы, обладающие гидролитической активностью.




Правила заезда на ББС
В 2017 году на ББС вводятся новые правила заезда и отъезда.

Атлас
флоры и фауны Белого моря

Правила заезда на ББС
В 2017 году на ББС вводятся новые правила заезда и отъезда.

 

+7 (815) 33-64-516

Электронная почта: info@wsbs-msu.ru

Вход в почту @wsbs-msu.ru



2008 создание сайта: Создание сайтов - DeCollage
© 2000-2015 ББС МГУ